Вибриозный вестибуло-вагинит.

     Вибриозный вестибуло-вагинит – один из клинических признаков вибриоза у крупного и мелкого рогатого скота.

     Этиология.Возбудитель – плодовый вибрион Vibrio foetus – обнаруживается у самок во влагалищной слизи.

     Симптомы. В начале болезни – острая гиперемия и болезненность слизистой оболочки. Появляются на ней точечные и полосчатые кровоизлияния, образуется кровянистая слизь, скапливающаяся у шейки матки. В области клитора (под слизистой оболочкой) обнаруживают плотные некровоточащие образования с неровными краями. Проявления болезни возникают через несколько дней или даже через 1-2 месяца после заражения.

     Диагнозустанавливают на основе клинических признаков, эпизоотологических данных и результатов бактериологического исследования влагалищной слизи.

     Лечение. Назначают курс антибиотиков в/м, влагалище орошают 3-5% р-ром поваренной соли, применяют орошение дезинфицирующими растворами (риванола, фурациллина, ихтиола).

     Профилактика. Мероприятия должны быть направлены на выявление больных животных, их изоляцию и лечение. Большое профилактическое значение имеет искусственное осеменение животных спермой здоровых производителей.

     Бруцеллез. Заразная болезнь, возбудителем которой являются микробы-бруцеллы. Болеют все виды животных и человек. Бруцеллы проникаютв организм животного, вызывают поражение суставов, у самцов семенников, а у беременных животных аборты во второй половине беременности. Возбудитель выделяется с фекалиями, молоком, околоплодной жидкостью, абортированными плодами. Больные животные не излечимы, они подлежат убою. Для ранней диагностики проводят исследование крови. Профилактическая вакцинация проводится в неблагополучных зонах.

     Туберкулез – Хроническая инфекционная болезнь животных и человека, вызывается микобактериями. Попадая в организм, они локализуются в различных частях тела животного, образуя туберкулы (узелки), разрушая окружающие ткани, разносятся по лимфатическим сосудам по всему организму. Больные животные худеют, обнаруживается опухание лимфатических узлов, кашель при легочной форме. Диагностируется туберкулиновой пробой. Реагирующие животные подлежат убою.

     Лептоспироз вызывается лептоспирами, заражение происходит через воду, корма. Возбудитель проникает в организм через слизистые оболочки и поврежденную кожу. Заболевание протекает с повышением температуры тела, желтушностью, абортами беременных животных, некрозами кожи. Диагноз ставится при обнаружении лептоспир в абортированных плодах и крови. С лечебной целью применяют противолептоспирозную сыворотку и стрептомицин. В неблагополучных хозяйствах животных вакцинируют.

     Профилактика и борьба с инфекционными болезнями.

         Главный источник возбудителя инфекционных и инвазионных заболеваний – больное животное. Поэтому для комплектования ферм животных берут из благополучных по заразным болезням хозяйств.

     Перед вывозом из хозяйства животных исследуют на скрытые инфекции (бруцеллез, лейкоз, туберкулез).

     В благополучных по заразным болезням хозяйствах ежегодно проводят плановые диагностические исследования. Для создания невосприимчивости животных – проводят плановые профилактические вакцинации.

     Для предупреждения заноса инфекции дикими и бродячими животными фермы ограждаются плотным забором, ведется борьба с грызунами.

     Соблюдение зоогигиенических условий содержания животных, сбалансированное кормление, активный моцион повышают резистентность организма, являются важным фактором профилактики заразных болезней. Кроме того, хорошим методом, предупреждающим распространение инфекционных заболеваний, является искусственное осеменение животных при соблюдении ветеринарно-санитарных правил.

Контрольные вопросы:

1. В чем состоят основные меры профилактики инфекционных заболеваний половых органов с/х животных?

2. Инфекционный вестибуло-вагинит: этиология, диагностика, лечение и профилактика.

3. Трихомонозный вестибуло-вагинит: этиология, диагностика, лечение и профилактика.

4. Назовите основные признаки вибриозного вестибуло-вагинита, составьте схему лечения при данном заболевании.

Тема 11. Л Е Ч Е Н И Е И П Р О Ф И Л А К Т И К А А К У Ш Е РС К О -

 Г И Н Е К О Л О Г И Ч Е С К И Х Б О Л Е З Н Е Й М Е Л К И Х Д О М А- Ш Н И Х Ж И В О Т Н Ы Х .

ЦЕЛЬ ЗАНЯТИЯ. Овладеть навыками диагностики и лечения акушерско-гинекологической патологии мелких домашних животных.

Оборудование:собаки и кошки с различными послеродовыми и гинекологическими заболеваниями, лекарственные препараты( антибиотики, растворы новокаина 0,5-1%, растворы фурациллина , перманганата калия, риванола, ваготил, 40% раствор глюкозы, 10% раствор хлорида кальция, витаминные препараты, нейролептики), спиртовые тампоны, шприцы и иглы, спец.одежда,веревки, мыло и полотенце.

Послеродовая эклампсия. Это острое нервное заболевание, характеризующееся внезапно наступающими припадками тонико-клонических судорог. Болезнь наблюдается у собак, реже - у кошек.

     Этиология. Эклампсия может возникнуть при погрешностях белково-минерального кормления, снижении уровня кальция в крови, токсикозах, повышенной чувствительности организма матери к продуктам обмена, выделяемыми плодами и плацентой, или к продуктам распада лохий и материнской плаценты.

     Симптомы. В 85% случаев эклампсия у сук развивается в первые две недели лактации, в 15% - в последние дни беременности. Предрасположены к заболеванию собаки мелких и средних пород.

     Появляется беспокойство животного (возбуждение, дрожь, скуление), через 15-20 минут нарушается координация движений, парализуется задняя часть туловища, появляются тонико-клонические судороги. Животное лежит на боку, шея вытянута, рот раскрыт, язык свешивается и вытекает пенистая слюна. Взгляд неподвижный и испуганный. Дыхание напряженное и частое, пульс слабо прощупывается, слабый и учащенный.

     Припадки длятся 1-20 минут, могут повторяться через несколько часов или дней.

     Эклампсия у кошек возникает в первые 7 дней лактации. Судороги очень сильны.

     Прогноз без лечения осторожный.

     Лечение. Больному животному предоставляется полный покой, исключают все внешние раздражители. Во время приступа предохраняют животное от травм.

     Назначают: раствор кальция хлорида 5-10% в/в 0,5-1,0 мл/кг; раствор глюкозы 5-40% в обычных дозах; раствор магния сульфата 25% в/в или в/м 2-10 мл (магнезию следует смешать с равным объемом новокаина 0,5%). Кроме того, вводят нейролептики или транквилизаторы – ромпун 0,05-0,1 мг/кг в/в. Дача препаратов через рот во время приступа запрещена.

     В период между приступами назначают успокаивающие и противосудорожные препараты: конвулекс по 1 капсуле 3 раза в день (дозу увеличивают еженедельно); хлоракон по 1 таблетке 3-4 раза в день; элениум по 1 таблетке 2-3 раза в день.

     Обеспечивают организм самки достаточным количеством солей кальция и микроэлементами.

     Собаку на время лечения отделяют от щенков, которых выкармливают искусственно. Проводят профилактику мастита.

     При возникновении заболевания в конце беременности или во время родов, показано кесарево сечение.

     Профилактика.Уделяют особое внимание полноценномукормлению собак и кошек, своевременной вакцинации против инфекций.

Вульвит, вестибулит и вагинит. Наблюдают часто в послеродовый период у собак и кошек.

     Этиология. Травмирование родовых путей, инфицирование их при патологических родах и небрежном оказании акушерской помощи.

     Симптомы.Вульвиты и вестибуло-вагиниты по течению могут быть острыми и хроническими, по характеру проявления – серозными, катаральными, гнойными и некротическими.

     Для вульвита характерны отечность половых губ, покраснение их кожи, слизистой оболочки и болезненность при пальпации. Вестибуло-вагиниты сопровождаются выделением экссудата – серозного (водянистого), катарального (слизистого и мутного) и гнойного. Слизистая оболочка преддверия и влагалища покрасневшая, отечная, с кровоизлияниями, а при гнойном воспалении и с изъязвлениями. У больного животного наблюдается беспокойство, болезненное мочеиспускание.

     Гнойный процесс часто протекает в флегмонозной форме с образованием абсцессов в паравагинальной клетчатке. Общее состояние самки при этом значительно ухудшается, температура тела повышена, развивается пиемия и септицемия.

     Некротический (дифтеритический) вестибуло-вагинит - следствие обширных родовых травм, сопровождается омертвением тканей и образованием на их месте глубоких язв. Из половой щели выделяется грязно-бурая или зеленоватая ихорозная жидкость. Животное угнетено, отказывается от корма, температура тела высокая.

     Прогноз при серозной, катаральной и гнойной формах вестибуло-вагинита благоприятный, при флегмонозной и некротической – осторожный.

     Лечение. Орошение слизистой оболочки преддверия и влагалища растворами вяжущих и дезинфицирующих средств: перманганата калия 1:10000, фурациллина 1:5000, ихтиола 3-5% (передняя часть туловища при проведении орошения должна быть несколько выше задней).

      Введение в полость влагалища антимикробных линиментов, эмульсий, мазей (линимент синтомицина, 5% суспензию фуразолидона, мастисан А,В,Е, ваготил 36% на тампоне на 1-3мин).

     При флегмонозном и некротическом вестибуло-вагинитах назначают и общую антибиотикотерапию (клафоран в/м по 1,0 г 2 раза в сутки в течение 5 дней; байтрил внутрь по 1 таблетке, 1 раз в сутки в течение 3-5 дней).

Острый эндометрит – воспаление слизистой оболочки матки. Чаще всего регистрируется послеродовой эндометрит.

     Этиология. Травмирование эндометрия и его инфицирование при патологических родах, задержании последа и субинволюции матки. Предрасполагающие факторы: неполноценное кормление, отсутствие моциона, антисанитарные условия содержания, понижение резистентности организма.

     Симптомы. Вначале развивается катаральное воспаление, которое переходит в катарально-гнойную и гнойную формы. Слизистая матки отечна, гиперемированна, на ней обнаруживаются кровоизлияния и изъязвления.

     Проявляется заболевание на 2-5 сутки после родов. В начале развития процесса общее состояние животного не изменяется, в дальнейшем отмечается угнетение, повышение температуры тела на 0,5-1,0° С, уменьшение аппетита, снижение секреции молока. Из наружных половых органов выделяется слизисто-гнойный или жидкий мутный экссудат серого цвета с примесью крови и с ихорозным запахом. Выделения при эндометрите обильные, усиливаются при лежании животного.

     Пальпацией через брюшную стенку устанавливают увеличение объема матки, иногда болезненность и флюктуацию. При пальпации выделения из половой щели усиливается.

     При своевременном комплексном лечении прогноз благоприятный. При бессистемном или запоздалом – острый эндометрит переходит в хронический, обусловливающий бесплодие самки. При пониженной общей резистентности организма прогноз осторожный, поскольку развивается мио- и периметрит и сепсис.

     Лечение. Пациентку изолируют, тщательно ухаживают, улучшают кормление.

     Для усиления сокращения матки назначают: п/к или в/м окситоцин, гифотоцин, маммофизин в дозе собакам 2,5-10 ЕД и кошкам – 1-4 ЕД на фоне синестрола 2% масляного в дозе 0,1-5 мл в/м 2 раза с интервалом 24 ч.

     Для подавления микрофлоры в матке назначают общую антимикробную терапию: бициллин, ампициллин или ампиокс в дозе 10-100 тыс. ЕД/кг; гентамицин в дозе 1 мг/кг; клафоран, цефамизин, фортум, кефзол по 10-100 тыс. ЕД/кг. Препараты вводят в/м 2-3 раза в сутки 5-7 дней. Местно применяют для введения в полость матки комбинации антимикробных препаратов в форме растворов или суспензий на водной или масляной основе, содержащими в 100 мл:

· левомицетина – 1,0, синтомицина – 2,0, стрептоцида – 5,0;

· норсульфазола или стрептоцида – 5,0, бензилпенициллина – 0,5, стрептомицина – 1,0.

Или же внутриматочно вводят линимент синтомицина, эмульсию септиметрина, мазь Конькова, ваготил и др. Препараты применяют собаке – 3-20 мл, кошке – 2-5 мл 1-2 раза в день 3-7 дней. Препараты вводят при помощи резинового катетера и шприца.

     При тяжелом течении эндометрита назначают в/в 5-40% раствор глюкозы; в/в 10% раствор хлорида кальция собаке 5-10 мл, кошке – 1-5 мл; в/в 40% раствор гексамитилентетрамина собаке 1-3 мл, кошке 0,5-2 мл.

     Если состояние больного животного не улучшается, проводят экстирпацию матки.

Контрольные вопросы:

1. Чем характеризуется проявление послеродовой эклампсии? Когда она возникает? Каковы принципы лечения?

2. Этиология, клиника и лечение вестибуло-вагинитов.

3. Острые и хронические эндометриты: этиология, симптоматика и лечение.

Тема 12. Л А Б О Р А Т О Р Н А Я Т Е Х Н И К А И М Е Т О Д Ы О Б Е З - З А Р А Ж И В А Н И Я И Н С Т Р У М Е Н Т О В, П О С У Д Ы И М А - 

Т Е Р И А Л О В П Р И И С К У С СТ В Е Н Н О М О С Е М Е Н Е Н И И.

ЦЕЛЬ ЗАНЯТИЯ. Ознакомиться с основами лабораторной техники и методами обеззараживания посуды, инструментов, и других материалов, используемых при искусственном осеменении.

Оборудование:вода дистиллированная, спирт ректификат, сода двууглекислая, фурациллин, хлористый натрий, лимоннокислый натрий, вазелин, вода горячая, вата гигроскопическая, марлевые салфетки, весы с разновесами, цилиндры градуированные на 200 и 100 мл, спиртометр, стеклянные банки для растворов, банка для стерилизации вазелина, банка для тампонов, стеклянные палочки, стерилизатор, электроплитка, сушильный шкаф, бумага оберточная, пинцеты и корнцанги, влагалищное зеркало.

Употребляемое для искусственного осеменения оборудование должно быть чистым и стерильным. Для этого новые или бывшие в употреблении инструменты и посуду подвергают тщательной обработке: моют в горячем растворе пищевой (20-30 г на литр воды) или стиральной соды (10-15 г на литр воды), отмывают щеткой, ершом или марлей, навернутой на корнцанг, резиновой трубкой или куском поролона; после мытья инструменты и посуду тщательно прополаскивают горячей водой, а затем дистиллированной, протирают чистым полотенцем или марлевой салфеткой, либо просушивают на воздухе, после чего стерилизуют и кладут на хранение.

Стерилизация кипячением. Этим способом стерилизуют стеклянную посуду, шприцы-катетеры, металлические инструменты. Воду берут дистиллированную или кипяченую, остуженную и профильтрованную.

Шприц катетер перед кипячением разбирают, цилиндр шприца обвертывают бинтом и прикрепляют к нему поршень (поршни индивидуально притерты к каждому цилиндру и менять их нельзя). Склянки обертывают марлей или ватой. На дно стерилизатора кладут слой марли или ваты, помещают инструменты отдельно от посуды, наливают воды 2/3 объема и кипятят 15-20 мин. Охлаждают, не снимая крышки. Стерильным пинцетом извлекают инструменты, в шприцы вставляют поршни (тщательно удаляя воду), завертывают шприцы в салфетку или бумагу (проглаженную горячим утюгом). С посуды воду удаляют стерильными марлевыми салфетками, закрывают крышками.

Пластмассовые инструменты кипятят 5 минут в 2% растворе бикарбоната натрия, обмывают дистиллированной водой, просушивают.

Металлические инструменты кладут в кипящую воду (иначе они покроются ржавчиной) и кипятят 15-20 мин. Высушивают, протирают стерильными салфетками.

Стерилизация сухим жаром. Проводится в сушильном шкафу при температуре 160-180°С или в духовке плиты в течение 15-30 мин. Стерилизуют сухим жаром стеклянную посуду, шприцы-катетеры в разобранном виде, предварительно обернув их бумагой.

Стерилизация фламбированием. Фламбирование стерилизуют перед самым употреблением чисто вымытые влагалищные зеркала, ножницы и пинцеты, пенициллиновые флаконы, стеклянные палочки и т.д. Проводят фламбирование над некоптящим пламенем.

Обеззараживание спиртом. Для обеззараживания шприц-катетеров применяют 70° спирт-ректификат, с последующим удалением его стерильным свежеприготовленным 1% раствором бикарбоната натрия.

Шприц тщательно отмывают от спермы 1% раствором бикарбоната натрия, набирают не менее 3 раз 70° спирт-ректификат и удаляют его остатки промыванием стерильным свежеприготовленным 1% раствором бикарбоната натрия или 2,8-3,0% раствором лимоннокислого натрия 5-6 раз. Пинцеты, стеклянные палочки и термометры обеззараживают тампонами, пропитанными 96° спиртом.

Вазелин стерилизуютна водяной бане в течение 30 мин.Объем вазелина не должен превышать 100-150 мл, вода в «бане» должна доходить до уровня вазелина в банке.

Все обработанные инструменты хранят в застекленных, окрашенных белой краской шкафах.

Приготовление растворов.При искусственном осеменении необходимы растворы: 1% - хлористого натрия, 1% и 2-3% - двууглекислой соды, 2,8-3,0% - лимоннокислого натрия, раствор фурациллина 1:5000, 70° спирт.

2,8-3% раствор лимоннокислого натрия готовят ежедневно, растворяя в дистиллированной воде 2,8-3 грамма лимоннокислого натрия и подогревая до 90-95°С.

1% раствор хлористого натрия готовят ежедневно перед употреблением. В 100 мл дистиллированной или кипяченой и профильтрованной воды растворяют 1 г химически чистого хлористого натрия.

1% раствор двууглекислого натрия готовят ежедневно перед работой. Дистиллированную воду кипятят, остужают до 40°С, растворяют двууглекислый натрий из расчета 10 г на литр.

2-3% раствор двууглекислого натрия или 1,5% раствор кальцинированной соды готовят в эмалированной или стеклянной посуде. Для этого на 1 литр горячей воды берут 20-30 г двууглекислой соды или 15 г кальцинированной.

70° раствор спирта готовят, добавляя к 73 мл 96° спирта 27 мл прокипяченной дистиллированной воды. Правильность приготовления проверяют спиртометром.

Контрольные вопросы:

1. Какие инструменты стерилизуют кипячением? Какая особенность в стерилизации стеклянных и металлических инструментов?

2. Стерилизация фламбированием и сухим жаром: расскажите методику.

3. Какие растворы готовят при искусственном осеменении?

Тема 13. П Р О В Е Д Е Н И Е О С Е М Е Н Е Н И Я К О Р О В И 

Т Е Л О К  Р А З Л И Ч Н Ы М И М Е Т О Д А М И .

ЦЕЛЬ ЗАНЯТИЯ.Освоить практические приемы искусственного осеменения коров и телок.

Оборудование: коровы и телки в охоте, влагалищные зеркала, стеклянные шприцы-катетеры, комплекты для маноцервикального осеменения коров, три баночки с притертой пробкой, ватные тампоны, растворы: 1% натрия бикарбоната (двууглекислого) или 2,8% - лимоннокислого натрия, 70° спирта – ректификата; тампоны пропитанные 96° спиртом, стерильные марлевые салфетки, стеклянные палочки, микроскопы, покровные и предметные стекла, термос со спермой, анатомические пинцеты, спиртовки, мыло, полотенце, вода.

Осеменение шприц-катетером через влагалищное зеркало (визо-цервикальное).

Инструменты готовят в лаборатории пункта, где на столе располагают 4 пронумерованные стеклянные банки (1, 2, 3, 4) емкостью 100мл с притертыми пробками. В банки 1,3 и 4 наливают свежеприготовленный 1% раствор бикарбоната натрия или 2,8% раствор лимоннокислого натрия, в банку 2 – 70% спирт; раствор в банках 3 и 4 должен быть теплым (38-40°С), чтобы шприц нагревался перед наполнением его спермой.

Шприц обрабатывается путем его отмывания раствором по 3-4 раза из банки 1, и после обеззараживания спиртом из банки 2, банок 3 и 4.

Набрав сперму, шприц держат катетером вверх. Влагалищное зеркало, увлажненное теплым раствором хлорида натрия или углекислой соды, вводят, раскрыв половые губы во вла­галище самки, держа зеркало ручками в сторону. Далее зеркало поворачивают ручками вниз, осторожно раск­рывают и, отыскав шейку матки, вводят в ее канал шприц-катетер на глубину 4—6 см. Медленно, нажимая на поршень шприца, выдавливают сперму. После этого шприц-катетер, а затем зеркало извлекают, предвари­тельно осторожно повернув последнее ручками в сторо­ну. При осеменении нескольких коров спермой одного быка наружную поверхность катетера после каждого животного обязательно дезинфицируют спиртовым там­поном.

При осеменении спермой разных быков шприц об­рабатывают, как указано выше.

Влагалищное зеркало после осеменения каждой ко­ровы моют теплым 2—3%-ным раствором двууглекислой соды, вытирают насухо и обеззараживают.

Ректо-цервикальный способ. При этом способе при­меняются пластмассовые шприцы, полиэтиленовые или резиновые баллончики для выдавливания спермы, по­лиэтиленовые или резиновые перчатки и осеменительный инструмент.

Перед осеменением уголок пакета с одноразовыми пипетками протирают тампоном, смоченным 96°-ным спиртом, и надрезают стерильными ножницами или прорывают концом пипетки. Выдвинув пипетку на одну треть длины, соединяют со шприцем или баллончиком, пакет закрывают путем запаивания или при помощи скрепки.

Сперму, сохраняемую во флаконе или другой ем­кости, набирают в пипетку при помощи шприца или баллончика.

При использовании пайет (соломинок) осеменение коровы и телок проводят при помощи осеменительного инструмента. Осеменительный инструмент, состоящий из чехла, тонкого металлического цилиндра с поршнем длиной 450 мм и фиксационной пружины, готовят сле­дующим образом. Пакет с защитными чехлами обра­батывают спиртовым тампоном, отрезают уголок и на предварительно подготовленный шприц с пайеткой со спермой надевают защитный чехол и фиксируют фик­сационной пружиной.

После подготовки осеменительного прибора прово­дится следующая работа: перчатку надевают на руку, увлажняют ее теплой водой (лучше мыльной) и раскрывают наружные поло­вые губы коровы или телки.

Другой рукой вводят пи­петку во влагалище. Во избежание попадания в отвер­стие мочеиспускательного канала пипетку сначала прод­вигают снизу вверх и вперед, далее горизонтально до упора в шейку матки. Затем руку в перчатке вводят в прямую кишку и фиксируют шейку матки между ука­зательным и средним пальцами. Большим пальцем ощу­пывают отверстие шеечного канала и с его помощью вводят в канал пипетку или шприц-катетер. При попа­дании инструмента в канал шейки матки вращательным движением шейку натягивают на пипетку.

Убедившись, что инструмент введен в канал шейки матки на необходимую глубину (4—6 см), медленным давлением на поршень вводят сперму. После этого ин­струмент и руку извлекают соответственно из влагали­ща и прямой кишки животного.

Мано-цервикальный способ осеменения. В набор инструментов при этом способе осеменения входят: по­лиэтиленовая ампула, катетер, одноразовый шприц, по­лиэтиленовые или резиновые перчатки. Применяется способ только для осеменения коров.

После тщательного туалета наружных половых орга­нов коровы проводят осеменение; для чего: ампулу со спермой достают из термоса, оттаивают, если она хра­нится в жидком азоте, протирают спиртом, стерильны­ми ножницами срезают колпачок ампулы, выдавливают каплю, спермы на предметное стекло для определения активности спермиев, затем соединяют ампулу с кате­тером, не вынимая его из упаковочного полиэтиленово­го пакета.

     На руку надевают перчатку, смазывают ее стерильным вазелином,

физиологическим раствором, осторожно вводят руку во влагалище и пальцами делают легкий массаж шейки матки. Другой рукой подают подготовленную ампулу с катетером, и под контролем указательного пальца встав­ляют катетер в канал шейки матки, массируя шейку матки, подталкивают ампулу до тех пор, пока инстру­мент не будет введен на глубину до 6 см. После этого сперму выдавливают большими и указательными паль­цами, нажимая вначале у донышка, затем по направле­нию к шейке ампулы. Не разжимая ампулы, осторожно вынимают катетер и массируют шейку.

При всех способах осеменения, независимо от вида хранения спермы, глубина введения осеменительного инструмента в шейку матки должна быть 4—6 см. В до­зе для осеменения должно быть не менее 10 млн. спер-миев с активным поступательным движением.

Кратность осеменения. Важным фактором плодо­творного осеменения животных наряду с выбором вре­мени осеменения является кратность осеменения. В со­ответствии с инструкцией коров и телок осеменяют дважды: первый раз после выявления у них охоты и второй раз—через 10—12 ч. В случае продолжения охо­ты дополнительные осеменения проводят через каждые 10—12 ч, вплоть до ее окончания.

Опытным техникам разрешается осеменять коров и телок однократно. При определении срока осеменения и выбора оптимального времени необходимо учитывать условия содержания, кормления и ухода за животны­ми, их возраст, упитанность и другие факторы. Содер­жание в сырых, темных и холодных помещениях без моциона, недостаточное и неполноценное кормление приводят к нарушению физиологических функций и протекания половых циклов.

Контрольные вопросы:

1. В чем преимущества и отличия разных методов искусственного осеменения коров?

2. Каковы особенности визо-цервикального метода?

3. Какова кратность осеменения коров и телок?

Тема 14. О С Е М Е Н Е Н И Е О В Е Ц И К О З.

ЦЕЛЬ ЗАНЯТИЯ.Изучить практические приемы и навыки существующих способов искусственного осеменения овец и коз.

Оборудование: Овцематки и козы в охоте, баран-пробник, баран для получения спермы, комплект искусственных вагин для барана, влагалищные зеркала для овец, микрошприцы с дозирующим приспособлением, шприцы-полуавтоматы, три баночки с притертой пробкой, ватные тампоны, растворы: 1% натрия бикарбоната (двууглекислого) или 2,8% - лимоннокислого натрия, 70° спирта –ректификата; тампоны пропитанные 96° спиртом, стерильные марлевые салфетки, стеклянные палочки, микроскопы, покровные и предметные стекла, анатомические пинцеты, спиртовки, мыло, полотенце, вода, переносные станки и станок для осеменения овец.

Овец осеменяют цервикально как неразбавленной, так и разбавленной спермой. Для вве­дения спермы овцам применяют шприцы-катетеры, шприцы-полуавтоматы разной конструкции и влагалищ­ное зеркало двух размеров — большое для взрослых и малое для ярок и овец с узким влагалищем.

Стерильный шприц-катетер перед работой промыва­ют несколько раз стерильным 1%-ным раствором хлори­да натрия. В подготовленном шприце устанавливают дозирующее устройство — бегунок так, чтобы ввести в шейку матки 0,05 мл неразбавленной спермы или 0,1— 0,15 мл разбавленной спермы с содержанием не менее 80 млн. активных спермиев. Животных осеменяют в станке после обтирания наружных половых органов.

Овец предварительно осматривают при помощи вла­галищного зеркала на отсутствие в половых органах признаков заболевания — сыпи, крови, гноя. Если жи­вотное здоровое, осторожным движением зеркала нахо­дят шейку матки и катетер шприца вводят в канал шейки на глубину 1—2 см. Для введения спермы на­давливают на поршень большим пальцем. Перед осе­менением следующей овцы катетер шприца обтирают тампоном, пропитанным 96°-ным спиртом, следят за тем, чтобы спирт не попал в каналы шприца.

Если сперма израсходована, шприц промывают 1%-ным стерильным раствором хлорида натрия, а затем 70°-ным спиртом и оставляют на хранение.

Кратность осеменения.Овец, выявленных в охоте бараном-пробником, осе­меняют сразу, и если охота продолжается, то повторно через 12 ч, на следующее утро маток пускают в новую группу для выявления в охоте пробником, и при нали­чии охоты их осеменяют.

Контрольные вопросы:

1. Методика проведения искусственного осеменения овец.

2. Время и кратность осеменения овец.

Тема 15. О С Е М Е Н Е Н И Е С В И Н Е Й.

ЦЕЛЬ ЗАНЯТИЯ. Освоить технику искусственного осеменения свиней.

Оборудование: свиноматки в охоте, свежеполученная и разбавленная сперма хряков, микроскопы, покровные и предметные стекла, обогревательный столик, пипетки или стеклянные палочки, полиэтиленовый прибор для осеменения, универсальный зонд УЗК-5, поролоновый термос, дистиллированная вода, 2-3% раствор двууглекислой соды, стерилизатор, пинцет, синтетическая среда для разбавления спермы, 0,9% раствор натрия хлорида, сушильный шкаф, водяная баня, стерильные полиэтиленовые чехлы для катетеров, марлевые салфетки.

При искусственном осеменении свиней сперму вводят непосредственно в матку. Для осеменения применяют ПОС-5, т. е. полиэтиленовый при­бор, состоящий из флакона емкостью 150—250 мл, крышки, катетера с соединяющей муфтой. Можно ис­пользовать градуированные флаконы с резиновыми шлангами и шары Ричардсона. Такими приборами осе­меняют свиноматок предварительно разбавленной спер­мой. Для этого флакон со спермой подогревают в теп­лой воде (30—35°С) и помещают в термос. Перед осеме­нением отворачивают крышку и присоединяют катетер.

Свиней осеменяют на пунктах в индивидуальных ме­таллических клетках. Техник вводит катетер во влага­лище до упора в шейку матки (25—30 см). Флакон под­нимают выше спины животного и сдавливают стенки. Из стеклянного флакона сперму выдавливают при по­мощи шаров Ричардсона. Сперму необходимо вводить медленно. Доза разбавленной спермы около 1 мл на 1 кг живой массы животного, но не более 150 мл. В до­зе должно быть 3 млрд. активных спермиев.

Осеменяют свиноматок также при помощи унифици­рованного зонда—УЗК-5. Он состоит из двух (для спер­мы и среды) стеклянных или пластмассовых флаконов (по 180 мл), которые находятся под плексигласовым колпаком. Флаконы соединены резиновыми трубками с шарами Ричардсона и с металлическим зондом (кате­тером), имеющим на конце мелкую металлическую го­ловку. Соединительной муфтой вместо зонда можно прикреплять пластмассовый катетер. Осеменение сви­номатки фракционным способом отличается введением сначала разбавленной спермы, а затем заполнителя, при помощи которого сперма достигает верхней части матки.

После введения зонда во влагалище открывают фла­кон со спермой и при помощи шаров Ричардсона возду­хом вытесняют сперму в канал шейки матки. После вы­текания необходимой дозы спермы флакон закрывают и открывают флакон с заполнителем.

Температура спермы и заполнителя должна быть около 39°С. Доза взрослым свиноматкам 50 мл разбав­ленной не более чем в 6 раз спермы с наличием 2,5 млрд. спермиев. Молодым свиноматкам—70% дозы взрослых свиноматок.

Кратность осеменения. Свиней осеменяют в оптимальное время лишь при явно выраженной охоте. Началом охоты считают сред­нее время между двумя проверками. Если, например, при проверке в 8 ч утра свиноматка не допускала хря­ка, а при пробе в 19 ч появился рефлекс неподвижности, то считают, что охота началась в 19 ч, ее осеменяют вечером и на следующее утро. При трехкратном в те­чение суток выявлении охоты свиноматок осеменяют однократно.

Контрольные вопросы:

1. Назовите способы искусственного осеменения свиноматок.

2. Техника искусственного осеменения свиней.

3. Время и кратность осеменения свиноматок.

Тема 16. О С Е М Е Н Е Н И Е Л ОШ А Д Е Й.

ЦЕЛЬ ЗАНЯТИЯ. Освоить технику искусственного осеменения кобыл.

Оборудование: кобылы в охоте, свежеполученная неразбавленная и разбавленная сперма; станок для фиксации, случная шлейка; микроскопы, покровные и предметные стекла, обогревательный столик, пипетки глазные или стеклянные палочки, стеклянный шприц на 30-40 мл; эбонитовый катетер, катетер конструкции Иванова, 70° спирт, кипяченая вода, среды для разбавления спермы, спиртовые тампоны, стерильные ватные тампоны.

Кобыл, как и свиноматок, осе­меняют только в матку. Для этого кобыл ставят в спе­циальный станок или накладывают случную шлею. Ко­нец хвоста кобылы забинтовывают во избежание попа­дания жестких волос во влагалище.

Сперму необходимо подогреть в теплой воде до тем­пературы 30—35°С. Имеется несколько приемов вве­дения спермы. Чаще используют резиновый катетер И. И. Иванова, соединенный со стеклянным шприцем емкостью 20—30 мл или ампулой емкостью 30 мл. Кате­тер рукой, предварительно подготовленной, вводят во влагалище и, установив степень открытия шейки матки, направляют конец катетера в канал шейки матки. Свободной рукой продвигают катетер вперед до тех пор, пока он не войдет в канал шейки матки на глубину 10— 12 см. Присоединив к катетеру шприц со спермой, медленно выталкивают сперму при помощи поршня. После осеменения катетер вынимают. Иногда применяют эбо­нитовый катетер, который вводится при помощи зерка­ла. Осеменяют кобыл также ампульным способом, ам­пула вмещает 30 мл спермы. Ампула является емко­стью для перевозки спермы, для чего оба ее конца за­крывают резиновыми колпаками.

При осеменении кобыл с острого конца ампулы сни­мают колпачок, присоединяют к резиновому или эбо­нитовому катетеру, открывают конец ампулы с другой стороны и слегка поднимают. Можно вводить ампулу в шейку матки, а сперму выталкивать резиновым бал­лоном, соединенным с ампулой резиновой трубкой. До­за спермы во всех случаях осеменения как разбавлен­ной, так и неразбавленной должна составлять 20—40 мл.

Кратность осеменения.Кобыл осеменяют до наступления овуляции в 3—4-й стадии созревания фолликула. Если овуляция не насту­пила, то кобылу через 1—2 суток осеменяют вновь, и так до тех пор, пока не произойдет овуляция.

Контрольные вопросы:

1. Техника искусственного осеменения кобыл.

2. Время и кратность осеменения кобыл.

Тема 17.  И с к у с с т в е н н о е о с е м е н е н и е к р о л ь ч и х и п т и ц ы .

ЦЕЛЬ ЗАНЯТИЯ. Ознакомиться с технологией искусственного осеменения сельскохозяйственной птицы и крольчих.

Оборудование:крольчихи и кролики, стимуляторы половой функции, петухи и куры, индюки и индейки, гусаки и гусыни, растворы фурациллина 1:5000, 70° спирт, шприцы- катетеры, полистироловые или стеклянные пипетки, микроскопы, покровные и предметные стекла, обогревательный столик, кипяченая вода, среды для разбавления спермы, спиртовые тампоны, стерильные ватные тампоны, электрические спермособиратели, флаконы из-под антибиотиков с пробками, свежеполученная сперма.

     Осеменяют крольчих на пункте искусственного осеменения или в специальном помещении. После копуляции с вазектомированным самцом или введения гормонов (хориогонин, СЖК) самку фиксируют на специальном сто­лике спиной вниз. Ватным тампоном, увлажненным фурациллином (1:5000), обрабатывают наружные половые органы. Левой рукой слегка раскрывают половую щель, а правой рукой вводят во влагалище шприц-катетер (можно использовать специально подготовленный овечий), направляя его сперва вниз, а потом через лонное сращение переводят параллельно позвоночнику живот­ного.

При введении шприца нельзя допускать резких дви­жений. Сперму для осеменения используют свежеразбавленную по 0,3 мл или сохраняемую в течение 5—6 ч при 0°С по 0,4 мл с оценкой не ниже 6 баллов и 5— 10 млн. спермиев в дозе.

     Если шприц проходит во влагалище трудно, самке дают успокоиться, после чего катетер вводят на 12— 14 см и вспрыскивают сперму во влагалище у шейки матки. Для искусственного осеменения птицы при птич­нике оборудуют небольшую лабораторию, моечную комнату для получения спермы. Рядом с пунктом раз­мещают помещения для содержания самцов.

     Осеменяют птицу при помощи шприца-полуавтомата,

применяемого для осеменения овец, стеклянных или по­листироловых пипеток с резиновыми баллончиками. Ис­кусственно осеменяют птицу во второй половине дня: кур—один раз в 5 дней, гусынь—один раз в день и индеек—в начале сезона 2—3 раза через 1—2 дня, за­тем с интервалом 10—12 дней.

     Сперму вводят в яйцепровод на глубину 4—5 см, неразбавленную или разбавленную в дозе: курам— 0,02—0,03 мл с количеством спермиев в дозе 100— 150 млн. и активностью 7 баллов; гусыням 0,05 мл све­жеполученной и 0,1—0,2 мл разбавленной спермы с со­держанием в дозе 30—50 млн. активных спермиев; ин­дейкам — 0,025—0,03 мл неразбавленной спермы с ко­личеством 80—100 млн. подвижных спермиев в дозе при подвижности не ниже 7 баллов.

     Осеменение кур проводит бригада, состоящая из двух звеньев. Два человека получают сперму от петухов, вторые два или три человека проводят искусственное осеменение кур. При такой работе за час осеменяют до 500 кур.

     При осеменении гусей два человека получают спер­му, оценивают ее и разбавляют, два других отлавлива­ют и проводят осеменение гусынь, при этом за бригадой закрепляют 1400—2500 гусынь. Сперму от индюков по­лучают один или два человека, осеменяют индеек двое, подают и фиксируют самок два или три человека. Ку­рицу, гусыню, индейку держат так, чтобы руки охваты­вали с двух сторон крылья, прижимая их к корпусу, а пальцы охватывали ноги.

Контрольные вопросы:

1. Техника искусственного осеменения крольчих.

2. Техника искусственного осеменения сельскохозяйственной птицы.

Тема 18. ОТТАИВАНИЕ, ОЦЕНКА ГЛУБОКОЗАМОРОЖЕННОЙ И СВЕЖЕПОЛУЧЕННОЙ СПЕРМЫ. ТЕХНИКА БЕЗОПАСНОСТИ ПРИ РАБОТЕ С ЖИДКИМ АЗОТОМ.

ЦЕЛЬ ЗАНЯТИЯ. Овладеть методикой оценки качества свежеполученной и оттаявшей глубокозамороженной спермы.

Оборудование: спермоприемники со спермой быка и барана, градуированные мензурки с профильтрованной спермой жеребца и хряка, сосуды Дьюара с глубокозамороженной спермой быка, барана и жеребца, столики Морозова, микроскопы, предметные и покровные стекла, стеклянные палочки или глазные пипетки, счетная камера Горяева, меланжеры лейкоцитарные и эритроцитарные,3% раствор хлорида натрия, растворы фуксина или эозина, 96° спирт, эфир, 2,9% раствор натрия лимоннокислого, чашки Петри, сливные чашки.

Решающим показателем качества производителя служат результаты ис­следования спермы. Высокие экстерьерные показатели и кровность теряют

всякое значение, если у производителя выявляется аспермия или неполноцен­ная сперма.

При получении спермы для оценки производителя пользуются искусствен­ной вагиной. Если сперма недоброкаче­ственная, ее исследуют повторно. Нельзя забывать, что после длительных перерывов в половой нагрузке (у жереб­цов весной) производитель при первом коитусе почти всегда выделяет сперму низкого качества.

Доброкачественная сперма содержит достаточное количество живых, устой­чивых во внешней среде и способных принять участие в оплодотворении спермиев; она свободна от посторонних примесей (крови, гноя, микробов).

Сперму исследуют макроскопически и микроскопически. При работе со спер­мой быка придерживаются ГОСТов. По стандартам определяют содержание спермиев с анормальной морфологией и наличие включений, количество мер­твых спермиев, размеры спермиев, их подвижность (активность), абсолют­ную выживаемость и ряд других показа­телей.

Макроскопическое исследование. Оно не дает оснований для заключения о пригодности или непригодности спер­мы. Но результаты его служат предпо­сылкой для тщательного микроскопи­ческого исследования спермы, которое позволяет установить качество спермы, а также причины изменения ее внешне­го вида.                  

Исследование спермы начинают с определения ее объема с помощью мерной пипетки, градуированного ци­линдра или мензурки. Можно опреде­лять массу эякулята взвешиванием на лабораторных весах с погрешностью не более ±0,08 г.

Цвет нормальной спермы белый или белый с желтым оттенком. Серова­тый или голубоватый оттенок — при­знак олигоспермии (недостаточное чис­ло спермиев). Интенсивный желтый цвет обычно указывает на примесь мочи. Розоватый или красноватый — признак примеси крови, как следствие свежей травмы. Буро-красный - указыва­ет на глубокую травму половых путей давнего происхождения. Зеленоватый оттенок сперма приобретает от примеси гноя. Хлопья в сперме наблюдаются при воспалении пузырьковидных желез.

Запаха нормальная сперма не име­ет или обладает легким запахом жиропота. При хронических, гнойных процессах в семенниках или в придаточных половых железах сперма может иметь гнилостный запах.

Консистенция спермы быка сливкообразная, барана — сметанообразная, жеребца и хряка — сходная с мо­локом.

Качественные показатели спермы

Микроскопическое исследование спермы. При микроскопическом исследова­нии, прежде всего, определяют густо­ту и подвижность (актив­ность) спермиев. По густоте спермы ориентировочно устанавливают насыщенность ее спермиями, относя к густой (Г), средней (С) или редкой (Р). У быков оценка Г ставится, если все поле зрения микроскопа заполнено спермиями и в пространстве между ними не укладывается длина одного спермия. Средней считают сперму, ког­да между спермиями хорошо выражены промежутки, равные приблизительно длине спермиев. В редкой сперме рас­стояние между спермиями превышает их длину.

Сложнее определять густоту спермы производителей с маточным типом осе­менения, так как у них секреты прида­точных желез очень сильно разбавляют спермиев. У всех видов животных оцен­ка по густоте не позволяет точно устано­вить насыщенность спермы спермиями, поэтому с переходом на использование разбавленной спермы при оценке эякулята определяют концентрацию спер­миев.К использованию допускают сперму быков, хряков и жеребцов с оценкой Г и С, а у баранов — только Г.

Подвижность спермиев оценивают по 10-балльной системе. Каждый балл равен 10 % спермиев, об­ладающих поступательным движением. Если спермии имеют манежное движе­ние (по кругу) или только колеблются, качество спермы оценивают буквой К (колебательное движение). Сперму с не­подвижными спермиями обозначают буквой Н (некроспермия).

Подвижность неразбавленной спер­мы быка определяют при температу­ре 40 °С. На теплое предметное стек­ло наносят каплю спермы и 2—4 капли 3%-ного раствора цитрата натрия, пере­мешивают, накрывают покровным стек­лом и просматривают не менее трех по­лей зрения. Поскольку оценка спермиев по подвижности достаточно субъектив­на, то для контроля в необходимых слу­чаях можно определять количество жи­вых и мертвых спермиев.

При оценке спермы на густоту и подвижность спермиев применяют комплексное обозначение, позволяю­щее удобно отражать ее качество. Например, Г-10 баллов означает, что ис­следуемая сперма густая и 100 % спермиев обладают головным прямолиней­ным, движением; Г-9 баллов означает 90%, 8—80, Г-7—70% подвижных спермиев и т. д.

Концентрацию спермиев (количество в 1 мл эякулята) наибо­лее точно определяют в счетной камере Горяева или другого автора (см. Практи­кум по акушерству). Это один из основ­ных показателей качества спермы, на который ориентируются при разбавле­нии эякулята.

Для определения концентрации спермиев жеребцов Г. В. Паршутин и Е. В. Румянцева сконструировали специальные стандарты. Они представ­ляют собой запаянные пробирки, содер­жащие жидкость, имеющую цвет, соот­ветствующий той или иной известной концентрации спермы. Для определе­ния концентрации исследуемую сперму наливают в пробирку с диаметром стан­дартных пробирок, устанавливают ря­дом с ней пробирки стандарта и подби­рают наиболее подходящий по виду стандарт, на котором отмечено количе­ство спермиев в 1 мл спермы.

Концентрацию спермиев в эякулятах хряка удобно определять оптическим стандартом С. И. Сердюка.

В настоящее время станции искусст­венного осеменения пользуются фотоэлектроколориметрическим (ФЭК) методом, основанным не на прямом подсчете спермиев, а на учете степени оптичес­кой плотности спермы, т. е. мутности. Этот метод позволяет быстро (2—3 мин) определить концентрацию спермиев в сперме, но так как ФЭК создан для анализа истинных ра­створов, а сперма является взвесью и в ней содержится большее или меньшее количество эпителиальных и других клеток, то результат нередко может быть неточным.

Определение количе­ства мертвых спермиев. В. А. Морозов предложил использовать красители, которые окрашивают спер­миев только мертвых и с колебательны­ми движениями. Самый простой способ определения на скоростном (за 37— 40 с) авто­матическом счетчике клеток — целлоскопе. С этой целью можно использовать и венгерский прибор «Пикоскель». Способ окраски спермы быков следующий. Ис­следуемая сперма должна иметь кон­центрацию спермиев 0,2—0,4 млрд./мл, при более высокой концентрации эякулят разбавляют 3%-ным раствором цит­рата натрия до указанного показателя. Готовят 1—5%-ный раствор эозина водо-растворимого на 3%-ном растворе ли­моннокислого натрия. На чистое обез­жиренное теплое (35 ± 2 °С) предметное стекло наносят каплю спермы, добавля­ют 2—3 капли краски, подогретой до 30 °С, смешивают 2—4 с и делают три тонких мазка, которые высушивают.

Определение содержа­ния патологических форм спермиев и включений спермы у быков проводят в мазках, окрашенных азур-эозином или другими красителя­ми, где подсчитывают 100—200 сперми­ев и различные включения. Среди нор­мальных спермиев всегда находится бо­лее или менее значительное количество патологических форм. Чаще аномалии выявляются в хвостовой части сперми­ев, основании головки и шейки. С воз­растом к моменту физиологической зре­лости производителя количество ано­мальных спермиев уменьшается. Могут встречаться самые различные патологи­ческие формы спермиев: гигантского размера или карликовые, спермии с дву­мя-тремя головками, но общим хвос­том, с двумя хвостами, с укороченным хвостом, его деформацией или отсут­ствием, с цитоплазматической капелькой, слишком большой или маленькой головкой и другие формы. Иногда встречаются спермии, лишенные голов­ки, но способные двигаться.

Л. А. Черномаз отмечает как признак патологических спермиев слабо выра­женный перфораторий или его отсут­ствие. Нарушение структуры перфоратория и оболочки спермия — признак начальных изменений спермиев при их хранении.

Большое количество патологических спермиев свидетельствует о нарушении спермиогенеза, о вредном влиянии па­тологически измененных секретов при­даточных половых желез и мочевых пу­тей или, наконец, указывает на наруше­ние правил получения спермы и ее хра­нения во внешней среде от выделения до исследования.

В качестве конкретных причин обра­зования уродливых форм спермиев от­мечают: слабо развитые семенники; по­ражения семенника и придатка (гигант­ские и карликовые спермии), длитель­ные промежутки между коитусами, обусловливающие старение и распад спермиев в придатке (отдельные голов­ки, изолированные хвосты), половое ис­тощение производителя вследствие большой половой нагрузки или недоста­точного кормления (спермии с цитоплазматическими капельками в области шейки, тела и хвоста — незрелые спер­мии). Чем ближе к головке расположена капелька, тем моложе спермии.

Большое значение в образовании па­тологических форм спермиев придается нарушению терморегулирующей функ­ции мошонки.

Закручивание хвостов спермиев в сторону происходит при смешивании спермы с гипотоническим раствором (неправильная подготовка разбавите­лей, попадание воды).

При микроскопическом исследова­нии спермы выявляются следующие включения: клетки плоского, переход­ного эпителия, клетки семенных канальцев (зернистые), форменные эле­менты крови — эритроциты и лейкоци­ты, гиалиновые шары, круглые или овальные, иногда слоистые и напомина­ющие зерна крахмала, амилоидные тельца, сильно блестящие — лецитиновые зернышки, кристаллы спермина и др. Если примесей в сперме мало, это считается нормой. Если примесей мно­го, необходимо выявить их источник и причину. Значительное количество патологи­ческих спермиев следует, безусловно, расценивать как признак наступающей импотенции.

Дегидрогеназная активность спермы быка определяется скоростью обесцвечивания метиленовой сини в капилля­рах или в пробирках (метод Н. П. Шергина). Первый вариант получил более широкое распространение в практике. На предметное стекло, подогретое до 30—37°С, наносят каплю спермы и до­бавляют теплой пипеткой каплю 0,01%-ного раствора метиленовой сини, подогретого до 30°С. Капли тщательно перемешивают и набирают смесь в теп­лую (30—37 °С) стеклянную трубку дли­ной 5—6 см с внутренним диаметром 0,8—1 мм, чтобы высота столбика была 2—3 см. Заполненную смесью трубочку

кладут горизонтально на лист белой бу­маги в термостат с температурой 37 ± 0,5 °С. Записывают время начала исследования и окончания обесцвечи­вания метиленовой сини. Дегидрогеназную активность спермы (Да) в условных единицах вычисляют по формуле:

Да=ПсtС/10,

где Пс—подвижность спермиев, баллы; t—вре­мя обесцвечивания метиленовой сини в опыте, мин; С — концентрация спермиев, млрд./мл; 10 — постоянный коэффициент.

Все исследования спермы проводят при строгом соблюдении действующих стандартов и инструкций по искусст­венному осеменению сельскохозяй­ственных животных.

В результате исследования могут быть установлены следующие недостатки:

асперматизм (Азм) — отсутствие спермы;

олигосперматизм (Озм) — малый объем эякулята;

аспермия (А) — отсутствие в сперме спермиев;

олигоспермия (О) — недостаточное число спермиев в эякуляте;

некроспермия (Н) — мертвые спермии;

тератоспермия (Т) — патологические спермии и др.

Производителя можно использовать для естественного или искусственного осеменения, если его сперма отвечает требованиям действующей инструкции по осеменению животных.

Биологическая проба спермы. Решаю­щее значение для оценки спермы имеет определение оплодотворяющей способ­ности спермиев. Установлено, что она может быть выявлена только в отноше­нии определенной группы самок, нахо­дящихся при конкретных условиях су­ществования и времени осеменения. Оплодотворение зависит от степени родства самки и производителя, состоя­ния их здоровья, упитанности, качества кормления и др. Поэтому для определе­ния оплодотворяющей способности спермы лучше всего использовать здо­ровых ремонтных телок. Правильно по­ставленная биологическая проба спер­мы на здоровых животных — самый на­дежный критерий ее оценки. Все другие методы являются только косвенными, т. е. они позволяют лишь условно судить об оплодотворяющей способности спермы. Сперма считается нормальной, если оплодотворяемость от первого осе­менения составляет не менее 70—75 %. Быки с пониженной оплодотворяющей способностью спермы дают маложиз­ненное потомство, и их нельзя исполь­зовать ни при искусственном, ни при ес­тественном осеменении.

Наблюдения показали, что даже все­стороннее лабораторное исследование спермы иногда не отражает ее качеств. От некоторых жеребцов с прекрасными лабораторными показателями спермы оплодотворяемость кобыл оказывалась низкой, если интервалы между садками были больше 48 ч. Осеменение кобыл через 24—36 ч этими же производителя­ми давало резкое повышение плодови­тости.

В жаркие летние месяцы оплодотворяемость коров от замороженной спер­мы, как правило, низкая. Наиболее бла­гоприятное время для заготовки заморо­женной спермы — весна и осень. Спер­ма некоторых быков плохо заморажива­ется.

Разработана методика замораживания| спермы жеребцов в гранулах или алюминиевых пакетах (Е. М. Платов и др.).