Работа микроскопа в режиме цифровой видеотрансляции

МОСКОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ ТЕХНИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ

ИМ. Н.Э. БАУМАНА

(МГТУ им. Н.Э. Баумана)

Утверждено Редсоветом

МГТУ им. Н.Э. Баумана

УДК 615.478(075.8)

ББК 5:30.605

Г.Н. Змиевской

Исследование характеристик биологических микрообъектов

с помощью поляризационно-интерференционного микроскопа

Методические указания

Для выполнения лабораторных работ

По курсу

«Биомедицинская оптика»

                     Под редакцией И.Н. Спиридонова

Москва                                      2005

Цель работы ─ изучение принципа работы биологического поляризационно-интерференционного микроскопа и проведение качественных и количественных исследований биологических микрообъектов с помощью изученных методов.

Краткие сведения из теории

Микрообъектами считаются объекты с угловыми размерами менее 1΄. Такое значение связано с биологическим пределом разрешения органа зрения человека, задаваемым поперечным размером рецепторов (колбочек) на сетчатке глаза (около 2…2,5 мкм). Соответствующий угол ψ определяется как отношение этого размера к фокусному расстоянию f усредненного глаза (по Гульстранду). Если f » 15 мм, то оценка предельного угла дает значение y_min » 1,5×10^-4 рад, или около 30´´. Но реальное предельное значение следует брать примерно вдвое бόльшим, поскольку при усредненной оценке полагают достаточно большим уровень видимой яркости наблюдаемого объекта, а также сосредоточение его изображения в области центральной ямки на сетчатке, образующей круг радиусом около 0,2 мм. Очевидно, что такие условия на практике почти никогда не выполняются. Линейный размер объекта, различаемого под углом ~ 1´ с расстояния наилучшего зрения  » 250 мм, составляет примерно 0,07…0,1 мм (толщина лезвия от безопасной бритвы).

Таким образом, микрообъектом считается объект, размеры которого невозможно оценить невооруженным глазом из-за слишком малого угла зрения.

Микроанализ биообъектов, классификация которых приведена на рис. 1, имеет ряд особенностей, существенно отличающих его от анализа неживых микрообъектов. Главной из них является высокая степень прозрачности тонких слоев биообъектов по отношению к видимому спектру. Этим чрезвычайно затрудняется наблюдение биообъектов с количественным анализом структуры (в особенности вдоль оптической оси), поскольку возможность видеть микрообъект глазом означает отличие его коэффициента поглощения от такового для окружающей среды. Типичный же биологический микрообъект отличается от окружающей среды только показателем преломления и вносит изменения в фазу проходящей сквозь него световой волны, не меняя амплитуды. Решать задачу микроанализа биообъектов означает преобразовывать фазовый контраст в контраст интенсивностей. В обычном микроскопе для этого используется окрашивание образца, что для биообъектов допустимо только в крайне ограниченном числе случаев (живые клетки и ткани при окрашивании погибают).

Фазоконтрастные микроскопы, разработанные для анализа неживых микрообъектов, имеют ряд недостатков, не позволяющих широко использовать их в биологии и медицине. Так, в некоторых микроскопах (например, в отечественном многофункциональном измерительном микроскопе МБИ-15) используется известный метод Цернике, заключающийся во введении в заднюю фокальную плоскость объектива тонкой пластинки, вызывающей отставание или опережение фазы в нулевом порядке дифракции относительно остальных порядков на четверть периода. В результате области объекта с большей оптической толщиной кажутся либо более темными, либо более светлыми по сравнению с общим фоном (темный или светлый фазовый контраст).

Метод Цернике может быть усовершенствован (отверстие осветительной системы делается не круглым, а кольцевым). В случае кольцевого освещения роль нулевого порядка в дифракционном спектре играет кольцевая область, через которую проходит прямой (не дифрагированный) свет, причем фаза именно этой волны должна отставать или опережать на четверть периода фазы дифрагированных пучков. При правильном выборе ширины кольца можно существенно увеличить контраст объект/фон, поскольку величина этого контраста зависит от соотношения между величинами световых потоков в нулевом порядке и в остальных (не сдвинутых по фазе). Такая модификация метода Цернике называется методом фазового кольца. Этот метод вполне применим для анализа биологических микрообъектов, но он вносит значительную инструментальную погрешность, практически не позволяющую определять количественные характеристики объекта по наблюдаемому изображению.

Предлагаемый для изучения поляризационно-интерференционный метод выгодно отличается от других фазоконтрастных методов значительным расширением возможностей в отношении количественного микроанализа. Он пригоден для исследования практически любых прозрачных микрообъектов, а также для прецизионных измерений оптических путей, показателей преломления, двойного лучепреломления, поглощения, концентраций и других биофизических величин, связанных с оптическими свойствами микрообъектов.

2.Принцип работы поляризационно-интерференционного

микроскопа (ПИМ)

Если сопоставить оптические схемы простейшего (рис. 2, а) и поляризационно-интерференционного (рис.2, б) микроскопов, то можно видеть, что основное отличие этих схем заключается в наличии у последнего системы, создающей в проходящем через прозрачный объект свете два пучка, поляризованные во взаимно перпендикулярных плоскостях, и обеспечении наблюдения интерференционной картины, образующейся при наложении этих пучков после проектирования их векторов напряженности поля на выделенное анализатором направление. Интерференция здесь является основным способом преобразования фазового контраста в интенсивностный, а применение поляризационного разделителя пучков обеспечивает высокий контраст интерференционной картины вследствие подавления фоновой засветки.

Увеличение и разрешение ПИМ не отличаются от соответствующих характеристик обычного микроскопа. Увеличение, равное произведению увеличений объектива и окуляра, определяется как угловое увеличение по сравнению с угловым размером объекта y, наблюдаемого невооруженным глазом с расстояния наилучшего зрения . Исследуемый объект помещается на малом расстоянии от фронтальной линзы объектива, но так, чтобы объектив давал действительное изображение. Расстояние L от заднего фокуса объектива до переднего фокуса окуляра, почти равное при этом расстоянию от выходной линзы объектива до промежуточного изображения, называется оптической длиной тубуса микроскопа. Поскольку L » f_об, L » f'_об,, в пространстве между объективом и окуляром световой пучок можно считать в первом приближении параксиальным. Тогда, рассматривая промежуточное изображение через окуляр, работающий как лупа, получаем увеличение микроскопа в виде

                         (1)

Знак (-) в формуле (1) означает, что в микроскопе всегда наблюдается перевернутое изображение микрообъекта. В принципе, уменьшая f´_об  и f´_ок  и увеличивая L, можно добиться сколь угодно больших увеличений. Однако практически предел увеличения микроскопа устанавливается прежде всего из фотометрических соображений. Именно, если выходной зрачок окуляра оказывается меньше входного зрачка глаза, то видимая яркость изображения падает пропорционально отношению площадей этих зрачков. Увеличение, при котором выходной зрачок прибора и входной зрачок глаза совпадают, называется нормальным.

Нормальное увеличение микроскопа, как нетрудно определить из рис. 2, а, составляет

                     (2)

где α ─ входной апертурный угол со стороны объектива, n ─ показатель преломления среды в пространстве между образцом и объективом.

Если принять диаметр зрачка глаза d_зр = 2 мм, то для n = 1 (пространство между объектом и фронтальной линзой объектива заполнено воздухом) даже в случае sin α = 1 имеем N_норм = 250. Если же между объектом и объективом находится жидкость с показателем преломления n = 1,5, практически равным показателю преломления стекла (применяется иммерсия), то N_норм = 375.

Очевидно, что требование нормальности увеличения резко ограничивает возможности возрастания N. Если N >N_норм, то видимая яркость изображения падает как (N/N_норм)². Иммерсия несколько улучшает положение, сводя к пренебрежимо малой величине потери светового потока в пространстве между объектом и объективом (именно поэтому показатель преломления иммерсионной жидкости выбирается возможно более близким к показателю преломления материала линзы), но сути дела не меняет. Максимальное увеличение микроскопа типа BIOLAR составляет 1200 (12-кратный окуляр и 100-кратный объектив), при этом использование 40- и 100-кратных объективов требует применения иммерсии.

Превышение увеличения над нормальным связано со стремлением реализовать максимальное разрешение, несмотря на потери светового потока. Увеличение микроскопа, при котором реализуется максимальное разрешение, называется полезным. Оно определяется как отношение предельно различаемого на расстоянии наилучшего зрения расстояния между двумя точками при наблюдении невооруженным глазом (уже упоминавшаяся ранее толщина бритвенного лезвия), к предельно различаемому расстоянию, определенному на основании критерия Рэлея из дифракционных соображений:

                   (3)

где d_мин определяется по формуле Аббе:

        (4)

Определим полезное увеличение, используя (3) и (4).

Известно, что предельно разрешаемый угол зрения ψ_min, определяемый физиологически, с точностью до справедливости модели усредненного глаза по Гульстранду совпадает с предельным разрешаемым углом зрения, определяемым из дифракционных соображений согласно критерию Рэлея. Глаз при этом рассматривается как аналог объектива телескопической системы. В то же время предельно разрешаемое микроскопом расстояние d_мин по формуле Аббе (4) также определяется по критерию Рэлея. Отсюда следует, что дифракционная оценка предельного разрешения приводит к совпадению значений N_норм = N_пол, хотя требования нормальности и полезности увеличения выдвигаются из принципиально различных соображений.

Впрочем, эти «принципиально различные соображения» не так уж принципиально различны, если помнить, что сам критерий Рэлея имеет биологический смысл, как и вообще видимый свет. Физиологическая же оценка предельного разрешения, учитывающая практическую невозможность реализации дифракционного предела, дает N_пол > N_норм . Так, полагая  ψ_min = 0,1 мм, λ = 500 нм, n sin α = 1,5, получаем N = 500. Лучшие оптические микроскопы с мощными источниками подсветки (например, вышеупомянутый МБИ-15) дают увеличение до 1500…2000, однако в наиболее распространенных случаях оно не превышает 1000.

Освещение объекта при рассматривании в микроскоп возможно как при фокусировке пучка от источника света на объект (критическое освещение), так и при освещении объекта параллельным пучком (схема Кёлера). Критическое освещение более выгодно с точки зрения использования светового потока от источника. Однако оно неприемлемо для ПИМ, поскольку только в плоской волне фазовые соотношения остаются постоянными в процессе распространения. Следовательно, при выделении фазовых искажений, вносимых прозрачным объектом, необходимо создавать плоский волновой фронт, т.е. применять схему освещения по Кёлеру (см. рис. 2, б).

Коллектор Кол проецирует источник света Z (спираль лампы имеет малые размеры, моделируя точечный источник) в плоскость апертурной диафрагмы D , расположенной в фокусе конденсора К. Конденсор К проецирует в плоскость объекта В диафрагму поля зрения D_p, расположенную вплотную к коллектору Кол. Тем самым достигаются как квазипараллельность пучка, пронизывающего объект, так и равномерность освещения объекта за счет ограничения диаметра пучка диафрагмой поля зрения D_p.

Если выбросить из оптической схемы поляризационно-интерференционную систему (поляризатор Р, двупреломляющий узел ДППи анализатор А), то ПИМ типа BIOLAR может работать как обычный микроскоп, снабженный бинокулярной псевдостереонасадкой.

Поляризационно-интерференционная система состоит из двулучепреломляющей призмы (ДПП) Волластона W, поляризатора Р и анализатора А. Поляризатор Р выделяет из падающего на него пучка свет с заданной плоскостью поляризации. Затем свет проходит через щелевую диафрагму D, ширину которой можно менять в пределах от полного перекрытия пучка до полного открытия поля зрения. После прохождения коллимированного пучка поляризованного света через фазоконтрастный объект В и объектив Об он попадает на ДПП, которая может перемещаться как вдоль, так и поперек оптической оси. ДППразделяет падающий на нее луч на два (обыкновенный и необыкновенный), поляризованные во взаимно перпендикулярных плоскостях, обеспечивает заданный фазовый сдвиг между этими лучами и фиксированный угол γ между направлениями их распространения.

В результате выделения анализатором А направления вектора напряженности электрического поля, параллельного его плоскости пропускания, имеем интерференцию волн, составляющая колебаний электрического поля которых вдоль этого направления не равна нулю. В случае скрещенных направлений пропускания поляризатора Р и анализатора А амплитуды этих составляющих одинаковы и, следовательно, контраст интерференционной картины максимален. Интерференционные полосы имеют постоянную ширину вдоль всей длины призмы, определяемую формулой

                          (5)

Поскольку щелевая диафрагма D находится в фокусе конденсора К, причем щель S параллельна преломляющей грани ДПП, интерференционные полосы наблюдаются в плоскости изображения микроскопа. Но это означает, что мы наблюдаем одновременно с картиной полос и раздвоенное изображение микрообъекта, поскольку оно формируется как обыкновенной, так и необыкновенной волнами.

Внося фазовый сдвиг, микрообъект искажает картину полос, которая без искажений выглядит как «решетка» из параллельных темных и светлых полос (см. рис. 3). Вносимое искажение определяется оптической толщиной объекта t(n-n₀), где t ─ геометрическая толщина объекта; n, n₀ ─ показатели преломления объекта и окружающей среды соответственно. При одновременном наблюдении картины полос и раздвоенного изображения искажения выглядят как смещение полос в противоположных направлениях (метод интерференционных полос). Измеряя это смещение и сравнивая его с расстоянием между неискаженными полосами, можно определить толщину микрообъекта t. Одновременно можно определить поперечные размеры объекта аналогично тому, как это делается при работе с обычным микроскопом.

Очевидно, что для повышения точности измерений необходимо работать в монохроматическом свете ─ в этом случае контраст полос слабо зависит от порядка интерференции, и смещение может быть измерено с гарантированной точностью и воспроизводимостью. Если смещение фиксируется визуально, то можно утверждать, что измерению доступны объекты, смещающие картину примерно на 1/10 полосы (аналогично измерению обычной линейкой с делениями). Если же изображение анализируется фотометрически (например, с помощью проекции его на видикон или ПЗС), то вполне возможно измерение смещения порядка 1/1000 полосы (имеется в виду цифровая обработка изображения).

Смещение картины на одну полосу соответствует изменению разности хода на длину волны света. При визуальном наблюдении можно измерять оптическую толщину порядка λ/10, при фотометрическом с цифровой обработкой ─ λ/1000. Следовательно, применение волновой оптики в микроскопии раздвигает границы возможностей оптических микроскопов далеко за пределы, определяемые критерием Рэлея. Это важно именно для наблюдения микрообъектов биологической природы.

Особый интерес представляет случай совпадения точки расхождения обыкновенной и необыкновенной волн с фокусом объектива (см. рис. 2). При этом формально определяемая ширина полосы обращается в бесконечность. Что это означает практически? В плоскости изображения наблюдается картина в пределах одной полосы, без чередования максимумов и минимумов. Фазоконтрастный объект будет в этом случае отличаться от фона по яркости (при монохроматическом освещении), либо по цвету (при широкополосном освещении). Последнее очень удобно при визуальном наблюдении, поскольку глаз обладает высоким цветоразрешением. При освещении белым светом фазовый контраст в случае интерференции поляризованного света в параллельных лучах превращается не просто в интенсивностный, но в цветовой контраст, т.е. объект отличается от фона цветом (метод однородного цвета).

Однако при этом возникает чисто инструментальная проблема, осложняющая наблюдение. В самом деле, то, что в методе интерференционных полос составляло основу измерений – факт раздвоения изображений, формируемых обыкновенной и необыкновенной волнами, здесь является помехой, поскольку вызывает путаницу цветов или яркостей. Необходимо убрать это раздвоение из поля зрения. В микроскопе типа BIOLAR для этого предусмотрены два способа.

Один из них заключается в том, что ДПП задает очень малый угол расхождения обыкновенной и необыкновенной волн, так что в плоскости изображений раздвоение практически неразличимо. В этом случае прецизионное перемещение ДПП поперек оптической оси вызывает изменение цветов как фона, так и объекта, причем соотношение цветов объекта и фона определяется фазовыми искажениями, вносимым объектом. Прилагая цветовую таблицу, в которой указываются соответствующие каждому цвету фазовые сдвиги (и, следовательно, оптические толщины эталонных объектов), можно по наблюдаемой цветовой картине дать количественную оценку оптической толщины, подобно тому, как это делалось при использовании метода интерференционных полос. В силу малости расхождения обыкновенной и необыкновенной волн такая разновидность метода однородного цвета называется дифференциальным методом. Этимология этого названия может быть объяснена как малостью расхождения волн, так и фиксацией цветовых различий объект-фон, составляющей основу метода.

Второй метод борьбы с раздвоенностью изображений при однородном цвете как бы противоположен дифференциальному ─ «обыкновенное» и «необыкновенное» изображения не сливаются, а, напротив, раздвигаются настолько, чтобы заведомо друг на друга не накладываться (метод однородного цвета с большим раздвоением изображения). В этом случае прецизионное перемещение ДПП поперек оптической оси вызывает различную смену цветов для «обыкновенного» и «необыкновенного» изображений, так что можно найти такое положение ДПП, при котором одно из них сливается с фоном. Производя отсчет перемещения призмы между «исчезновениями» каждого из изображений, можно определять разность оптических путей без цветовых таблиц, как и в методе интерференционных полос, но с потенциально большей точностью и воспроизводимостью (здесь масштаб наблюдаемых в поле зрения величин больше в силу работы в пределах одной полосы).

Перечисленные методы анализа микрообъектов открывают большие возможности для микробиологии (измерение показателя преломления, концентрации, оптической плотности, содержания сухих веществ в клетках и субклеточных объектах и т. д.)

Порядок выполнения работы

3.1. Описание конструкции ПИМ.

Внешний вид ПИМ представлен на рис. 4, основные узлы, составляющие его конструкцию, ─ на рис. 5. На рис. 6 и 7 показаны регулировочные устройства, обеспечивающие настройку микроскопа и манипуляции в процессе работы.

Рассмотрим элементы конструкции ПИМ более подробно.

Интерференционная головка содержит три ДПП и анализатор. ДПП размещены на револьверном диске, который может перемещаться поворотом рычага 12 (см. рис. 6). На верхней панели нанесены цифры, соответствующие введению в луч призм № 1, 2, 3, и цифра «0», соответствующая отсутствию ДПП в ходе лучей. В положении «0» ПИМ работает как обычный микроскоп. Призма № 1 обеспечивает исследование дифференциальным методом, № 2 ─ методом интерференционных полос, № 3 ─ методом однородного цвета с большим раздвоением изображения.

Перемещение ДПП вдоль оптической оси (в вертикальном направлении) осуществляется поворотом лимба 2 (см. рис. 6) В случае применения призм № 1 и № 3 при таком перемещении производится настройка на однородно окрашенный фон, в случае призмы № 2 – изменяется ширина интерференционной полосы.

Перемещение ДПП поперек оптической оси (в горизонтальном направлении) осуществляется поворотом рукоятки 11 (см. рис. 6). Положение ДПП при таком перемещении отсчитывается по шкале микрометрического винта с ценой деления 0,01 мм.

Анализатор заключен в оправу 1 (см. рис. 6) со шкалой отсчета углов поворота вокруг оптической оси. На противоположной стороне шкалы нанесена точка, установка которой против отсчетной отметки означает выключение анализатора из хода лучей (при работе ПИМ как обычного микроскопа).

Конденсор со щелевой диафрагмой содержит регулировочные воротки 3 (см. рис 7) для изменения ширины щели и рычажки затенителей 10 (см. рис. 6) и 4 (см. рис. 7) для ограничения длины щели.

Вспомогательный микроскоп служит для наблюдения выходного зрачка объектива в процессе настройки. Его окуляр может перемещаться в обойме для наводки изображения на резкость.

Интерференционные фильтры служат для наблюдения в монохроматическом свете (зеленый FI 1546, λ = 546 нм; оранжевый FI 1590, λ = 589 нм).

Измерительный окуляр 12Х с микрометрической шкалой служит для отсчета поперечных расстояний в поле зрения.

Поляризатор 5 (см. рис. 6) заключен в оправу со шкалой отсчета углов поворота вокруг оптической оси от 0 до 180 градусов. Знаки на шкале («Х» между числами 40-50 и «П» между 130-140) указывают на скрещенное и параллельное положение поляризатора по отношению к анализатору, установленному в положение «45».

Объективы. Используются ахроматические объективы 10Х, 20Х, 40Х и 100Х. Два последних объектива являются иммерсионными.

Конденсор с компенсаторами и поляризационно-интерференционные объективы (с красной кольцевой полосой) в данной лабораторной работе не используются.

3.2. Порядок настройки микроскопа перед работой.

ВНИМАНИЕ! Часть регулировок произведена преподавателем заранее, поэтому КАТЕГОРИЧЕСКИ ЗАПРЕЩЕНО трогать не оговоренные в настоящем описании рукоятки и другие регулировочные устройства, равно как и выполнять описанные регулировки в иной последовательности. Нарушение этого указания может привести к выходу микроскопа из строя.

3.2.1. Установка освещения по Кёлеру

Для настройки освещения следует:

а) включить освещение тумблером на блоке питания и установить минимально необходимую яркость свечения лампы, вращая рукоятку реостата на блоке питания. При такой яркости светлое пятно на окошке осветителя (если смотреть сверху на основание микроскопа) едва заметно на темном фоне;

б) рычаг 12 (см. рис 6) переключения ДПП установить в положение «0»;

в) анализатор 1 (рис. 6) отключить, т.е. установить в положение, при котором против указателя в виде белого штриха находится черный штрих на оправе анализатора;

г) взявшись за оправу поляризатора двумя пальцами, аккуратно сдвинуть его на себя поперек оптической оси и снять с конденсора;

д) максимально раздвинуть щеки щелевой диафрагмы поворотом воротков 3 (рис. 7) по ходу часовой стрелки (воротки расположены на конденсоре под предметным столиком, см. рис. 7). Воротки приходится проворачивать на много оборотов, поэтому следует внимательно следить за их положением при повороте, чтобы не повредить винт при достижении упора;

е) затенители максимально раздвинуть перемещением рычажков 4 (рис. 7) и 10 ( рис.6) против часовой стрелки (если смотреть сверху).

ВНИМАНИЕ! Положение рычажков затенителей определяется при заглядывании под предметный столик. Не следует путать их с рукоятками самого предметного столика: рычажки затенителей плоские, рукоятки столика круглые, причем других плоских рукояток, кроме рычажков затенителей, у микроскопа нет;

ж) конденсор поднять вверх вращением рукоятки 9 (см. рис 6).

ВНИМАНИЕ! Перемещать конденсор осторожно, чтобы не упереться в предметное стекло или объектив микроскопа;

з) установить в луч объектив 10Х или 20Х поворотом револьверной головки;

и) поместить на предметный столик какой-либо пробный препарат и установить минимально необходимую для наблюдения препарата яркость свечения лампы, вращая рукоятку реостата на блоке питания. Оперируя сначала рукояткой грубой настройки 8, затем точной настройки 7 (см. рис. 6), навести изображение препарата на резкость;

к) вращая регулировочный лимб 6 (см. рис.6) в основании микроскопа, максимально уменьшить отверстие диафрагмы поля зрения (что легко контролируется по свечению окошечка на основании микроскопа, которое становится почти незаметным. После этого вращением рукоятки 9 (рис. 6) опустить конденсор в положение, при котором видно максимально резкое изображение диафрагмы поля зрения как светлого многоугольника на темном фоне, и вывести изображение диафрагмы регулировочными винтами 4 (рис. 6) в центр поля зрения);

л) поворотом лимба 6 (рис. 6) расширить диафрагму поля зрения так, чтобы она заняла почти все поле зрения (осталось только узкое темное кольцо по краям). Произвести дополнительную центровку диафрагмы винтами 4, если это необходимо (наблюдаемое темное кольцо не вполне концентрично с круглым полем зрения). Затем еще немного расширить диафрагму так, чтобы все круглое поле зрения стало светлым (но не больше);

м) вместо правого окуляра (вынимается свободно) вставить вспомогательный микроскоп;

н) настроить вспомогательный микроскоп перемещением окуляра (придерживая объектив, чтобы не смещался весь вспомогательный микроскоп) на резкое изображение выходного зрачка объектива в виде светлого кружка на темном фоне.

ВНИМАНИЕ! В центре поля зрения после настройки вспомогательного микроскопа появляется изображение нити накала лампы осветителя в виде не очень резких светящихся полос. Положение осветителя выставлено преподавателем заранее, и его патрон трогать не следует, чтобы не нарушить уже проведенные настройки;

о) вращая воротки 3 конденсора (рис. 7), установить щеки щелевой диафрагмы симметрично по отношению к центру поля зрения вспомогательного микроскопа так, как если бы они находились при наблюдении с расстояния наилучшего зрения без всякой оптической системы на 2-3 мм друг от друга;

п) установить поляризатор на место, вдвинув его по направляющим до щелчка (это необходимо делать плавно и осторожно, чтобы не нарушить настройку диафрагмы поля зрения. Нарушение этой настройки заставит повторить все предыдущие операции!);

р) ручками 8 и 7 (см. рис.6) добиться резкого изображения препарата.

Дальнейшие регулировки производятся в зависимости от выбранного метода наблюдения.

3.2.2. Работа при дифференциальном методе наблюдения.

Для исследования микрообъектов дифференциальным методом необходимо:

а) установить рычаг 12 (см. рис.6) в положение «1»;

б) передвинуть препарат (перемещая предметный столик рукоятками 1 и 2 препаратоводителя, см. рис. 7) так, чтобы в поле зрения не было препарата, а только фон (плоскость предметного стекла);

в) вращением оправы 1 анализатор установить на значение «45», а поляризатор 9 – на значение «Х». При правильной настройке это означает скрещенность поляризатора и анализатора, что соответствует максимальному контрасту интерференционных полос.

ВНИМАНИЕ! Правильность настройки контролируется переключением рычага 12 (рис. 6) в положение «0». Если при этом имеет место максимальное затемнение поля зрения, то скрещенность достигнута. Если же при указанной установке поляризатора и анализатора затемнение не максимально, то следует подрегулировать анализатор, увеличив яркость осветительной лампы вращением рукоятки реостата на блоке питания, после чего снова переключить рычаг 12 (рис. 6) в положение «1»;

г) поворачивая воротки 3 (рис. 7), сузить щель до видимой величины примерно 1 мм (см. п. 3.2.1, о) и установить ее в середине выходного зрачка объектива, наблюдаемого через вспомогательный микроскоп. В щели наблюдается картина цветных полос, причем цвета сменяются при повороте микровинтовой рукоятки 11 (рис.6). Установив в середине щели нулевую (темную) полосу, проверить параллельность щели и системы полос. Если наблюдается непараллельность, следует подрегулировать конденсор, поворачивая его за воротки 3 (рис. 7)вокруг оптической оси после небольшого ослабления фиксирующего винта 3 (рис. 6).

ВНИМАНИЕ! Винт 3 следует лишь немного ослабить, не допуская свободного перемещения конденсора. Если ослабление винта окажется слишком большим, возможно как выпадение конденсора из держателя, так и полная расстройка освещения, в результате чего всю настройку придется начинать сначала. После точной установки конденсора винт следует немедленно затянуть. Недопустима перетяжка винта, равно как и слишком большое его ослабление: диаметр винта мал, и излишнее усилие при затяжке может привести к его излому;

д) установить ширину щели так, чтобы в ней наблюдался однородный цвет. Первая полоса характерного насыщенного цвета при отстройке от темной нулевой полосы с помощью рукоятки 11 (рис. 6) имеет пурпурную окраску. Установив против щели пурпурную полосу, ограничить длину щели затенителями 4 (рис. 7) и 10 (рис. 6) до такой величины, чтобы изображение выделяемой полосы не было длиннее диаметра выходного зрачка объектива;

е) посмотреть в левый окуляр микроскопа. Если настройка щели правильна, то наблюдаемое поле зрения должно быть однородно окрашено в пурпурный цвет. Если однородность окраски поля зрения не имеет места (по краям примешиваются другие цвета), то следует повернуть лимб 2 (рис. 6) в каком-либо направлении до достижения однородности окраски. Поворачивать лимб 2 следует предельно плавно, чтобы не вызвать смещения ДПП поперек оптической оси (в этом случае картина полос неконтролируемо смещается, и пурпурный цвет исчезает). Если это все же произошло, следует снова посмотреть в правый окуляр и вернуть пурпурную полосу в щель с помощью рукоятки 11 (рис. 6). Поворот лимба 2 по часовой стрелке вызывает перемещение ДПП вверх, против часовой стрелки – вниз;

ж) с помощью ручек 1 и 2 (рис. 7) препаратоводителя ввести препарат в поле зрения объектива, выбрать исследуемый фрагмент и скорректировать наводку на резкость рукоятками точной настройки 7 (рис .6);

з) вынуть вспомогательный микроскоп и вставить на его место правый окуляр. Подстроить окулярные трубки тубуса, раздвигая либо сдвигая их в соответствии с расстоянием между зрачками оператора до максимального стереоэффекта (оба наблюдаемых изображения сливаются в одно). Скорректировать резкость изображения с помощью диоптрийного устройства, поворачивая кольцо на правом окуляре. При этом смена объективов посредством поворота револьверной головки может потребовать дополнительной наводки на резкость рукояткой точной настройки 7 (рис. 6).

ВНИМАНИЕ! Смена объектива поворотом револьверной головки должна проводиться предельно аккуратно и осторожно, поскольку рабочее положение объективов с большим увеличением (40Х и особенно 100Х) характеризуется очень малым расстоянием от фронтальной поверхности объектива до покровного стекла. Если поворачивать револьверную головку небрежно, то можно раздавить или сместить покровное стекло и тем самым ликвидировать всю процедуру микроисследования.

После настройки на резкость следует отрегулировать яркость свечения лампы осветителя до достижения наилучшей видимости деталей микрообъекта.

Микроскоп готов к работе. После проведенной настройки он установлен на пурпурный фон. Поворачивая рукоятку 11 (рис. 6), можно выбрать для фона любой интерференционный цвет. Для сравнения с изображением микрообъекта, получаемым в обычном микроскопе, можно временно выключить анализатор и переключить рычаг 12 (рис. 6) в положение «0».

3.2.3. Работа при наблюдении методом интерференционных полос.

Для исследования методом интерференционных полос требуется:

а) после установки освещения перевести рычаг 12 (рис. 6) в положение «2»;

б) аналогично предыдущему случаю вывести препарат из поля зрения объектива (см. п. 3.2.2, б);

в) скрестить поляризатор и анализатор (см. п. 3.2.2, в);

г) сузить щель диафрагмы воротками 3 (рис. 7) до такой степени, чтобы наблюдаемое во вспомогательном микроскопе ее изображение представляло четко разделенный дублет (двойную линию). Наблюдаемый дублет должен располагаться в середине выходного зрачка объектива;

д) посмотреть в левый окуляр микроскопа и убедиться в наличии в поле зрения системы параллельных цветных интерференционных полос. Если контраст полос мал, то следует аналогично п. 3.2.2, г подстроить положение конденсора относительно оптической оси до получения максимального контраста. Возможно увеличение контраста полос при небольшой подстройке анализатора и изменении ширины щели. Видимость полос можно улучшить, максимально увеличив яркость осветительной лампы реостатом блока питания. Поворачивая рукоятку 11 (рис. 6), можно перемещать всю систему полос в поле зрения. Поворачивая лимб 2 (рис. 6), можно менять ширину полосы. Рекомендуется проводить измерения при максимальной ширине полос (самое нижнее положение ДПП). Убедившись в достижении оптимальной настройки, вынуть вспомогательный микроскоп и вставить на его место правый окуляр. Произвести индивидуальную настройку под оператора аналогично п. 3.2.2, з.

Микроскоп готов к работе. При смене объективов может понадобиться подстройка ширины щели воротками 3 (рис. 7), отверстия диафрагмы поля зрения лимбом 6 (рис. 6), центровки конденсора рукоятками 4 (рис. 6).

Наблюдаемая при описанной настройке система полос имеет четко выраженную зависимость контраста полос от порядка интерференции (чем дальше полосы от нулевой темной полосы, тем ниже контраст). Это связано с немонохроматичностью источника света. Если на пути света поместить интерференционный фильтр (зеленый FI 1546 либо оранжевый FI 1590), то система полос заполняет все поле зрения, причем контраст почти не зависит от порядка интерференции (при хорошей настройке нулевую полосу выделить все же можно, но на результат измерений изменение контраста полос с ростом порядка практически не влияет).

При изменении увеличения (смене объективов поворотом револьверной головки) необходима дополнительная подстройка ширины щели, поскольку при большем увеличении условие наблюдения интерференционной картины реализуется при большей ширине щели. Это обстоятельство весьма существенно именно при работе в данном режиме измерения, поскольку потери света в методе интерференционных полос максимальны.

3.2.4. Калибровка окулярной шкалы.

Вместо одного из окуляров (лучше левого, не содержащего диоптрийной наводки) вставить измерительный окуляр 12Х и настроить его на резкость, поворачивая глазную линзу. В поле зрения должно быть максимально четкое изображение шкалы окуляра. Затем на место препарата поместить микрометрическую плитку с эталонной шкалой, цена деления которой 0,01 мм. Наведя шкалу плитки на резкость рукоятками 8 и 7 (рис. 6), совместить изображения обеих шкал. Это даст возможность определить цену деления окулярной шкалы для данного объектива. Результаты калибровки занести в таблицу с указанием точности определения цены деления (сравнить с табл. 1).

3.2.5. Калибровка ДПП при определении межполосного расстояния.

Этот вид калибровки проводится для каждого из выбранных методов исследования отдельно, поскольку используются различные ДПП.

Калибровка ДПП для дифференциальной призмы (№ 1):

а) настроить ДПП на пурпурный фон (установить пурпурный цвет в центре щели, наблюдаемой во вспомогательный микроскоп) и отметить отсчет на шкале микровинта рукоятки 11 (рис. 6);

б) перестроить ДПП на следующее появление пурпурного фона, поворачивая рукоятку 11 (рис. 6) в том же направлении от нулевой полосы и повторно отметить отсчет на шкале микровинта. Модуль разности отсчетов (а) и (б) представляет межполосное расстояние h. Цена деления шкалы микровинта 0,01 мм.

Точность калибровки ДПП может быть повышена как за счет уменьшения ширины щели (но в этом случае сильно падает видимая яркость изображения полосы в щели и затрудняется визуальная идентификация цвета), так и за счет увеличения числа отсчетов (берется отсчет при настройке на пурпурный цвет как в одну, так и в другую сторону от нулевой полосы, причем измерение можно многократно повторить). Среднее значение в выбранной серии отсчетов дает величину межполосного расстояния с точностью, необходимой для анализа наблюдаемого микрообъекта. В ходе выполнения лабораторной работы рекомендуется проделать калибровку по серии из 10 отсчетов (по 5 с каждой стороны от нулевой полосы). Результаты калибровки занести в таблицу и сравнить с приведенными в табл. 2).

Калибровка ДПП для призмы с интерференционными полосами (№ 2).

а) поворотом лимба 2 (рис. 6) переместить ДПП в крайнее нижнее положение;

б) наблюдая полосы через измерительный окуляр 12Х, установить перемещением системы полос посредством рукоятки 11 (рис. 6) середину интерференционной полосы на произвольно выбранный штрих окулярной шкалы. Отсчитать значение по шкале микрометрического винта рукоятки 11. Затем установить на тот же штрих середину соседней полосы. Сделать повторный отсчет по той же шкале. Модуль разницы отсчетов даст значение межполосного расстояния. Цена деления шкалы микровинта 0,01 мм.

Измерение ширины полосы лучше проводить в монохроматическом свете. Хотя в этом случае полосы практически эквидистантны, следует выбирать полосы поближе к нулевому порядку (по 5 с каждой стороны от нулевой полосы). После измерения 10 значений между соседними полосами взять среднее по 10 измерениям и найти дисперсию. Измеренные значения занести в таблицу и сравнить с приведенными в табл. 2.

Работа микроскопа в режиме цифровой видеотрансляции

Под цифровой видеотрансляцией подразумевается передача изображения микрообъекта с помощью цифровой видеокамеры в персональный компьютер (см. рис. 8). Для осуществления этого режима работы необходимо:

а) установить на микроскопе и закрепить винтом 4 (рис. 8) видеонасадку с подсоединенной к USB-порту компьютера Web-камерой 2, предварительно сняв окулярную насадку;

б) включить компьютер и запустить программу Logitech Quick Cam двойным щелчком левой кнопки мыши. В появившемся диалоговом окне выбрать закладку Quick Captuire;

в) получить на дисплее окно с изображением, передаваемым с камеры, а также кнопки: Take a picture(фотография), Video(запись видео), Close(выход) и окно QuickCam. Окно QuickCam позволяет редактировать изображение (масштабировать, изменять яркость и контрастность). При увеличенном изображении кнопки Face Tracking позволяют перемещаться по нему;

г) выбрать время задержки в режиме видео и при фотографировании. Для этого надо нажать на отметку ►, которая расположена на кнопке Take a picture/Video►. Это дает путь к папке: фотография/видео►File►Save as►(нужная папка), где будут сохраняться информационные файлы. Кроме отдельных фотографий, может быть создан видеофильм, продолжительность которого ограничивается возможностями компьютера;

д) сохранить полученную фотографию или видеофильм, для чего следует выбрать в главном меню File, затем выбрать пункт Save as. В появившемся окне указать название файла и путь к папке, в которой он будет сохранен. Сохранение происходит после щелчка по кнопке «Сохранить».

Дальнейшая обработка изображений может проводиться в графических редакторах или оригинальных программах обработки, выбираемых по усмотрению исследователя.