Студопедия КАТЕГОРИИ: АвтоАвтоматизацияАрхитектураАстрономияАудитБиологияБухгалтерияВоенное делоГенетикаГеографияГеологияГосударствоДомЖурналистика и СМИИзобретательствоИностранные языкиИнформатикаИскусствоИсторияКомпьютерыКулинарияКультураЛексикологияЛитератураЛогикаМаркетингМатематикаМашиностроениеМедицинаМенеджментМеталлы и СваркаМеханикаМузыкаНаселениеОбразованиеОхрана безопасности жизниОхрана ТрудаПедагогикаПолитикаПравоПриборостроениеПрограммированиеПроизводствоПромышленностьПсихологияРадиоРегилияСвязьСоциологияСпортСтандартизацияСтроительствоТехнологииТорговляТуризмФизикаФизиологияФилософияФинансыХимияХозяйствоЦеннообразованиеЧерчениеЭкологияЭконометрикаЭкономикаЭлектроникаЮриспунденкция |
Опыт № 1 Влияние фенола на время сгибательного рефлекса лягушки
Нейротропные агенты (токсины, фармакологические препараты и др.) могут поражать различные отделы нервной системы, в том числе и спинной мозг. Нарушение рефлекторной деятельности спинного мозга можно вызвать у лягушек, вводя им фенол, стрихнин или этанол. Показателем возникающих при этом нарушений рефлекторного аппарата спинного мозга может служить изменение времени сгибательного рефлекса (по Тюрку). Декапитировать ножницами лягушку и повесить её за нижнюю челюсть на крючок штатива. Через 15 минут определить время сгибательного рефлекса по Тюрку. Для этого измерить время между моментом погружения кончиков пальцев одной задней лапки в стаканчик с 2% раствором соляной кислоты и моментом её отдергивания. Измерение повторить трижды с интервалом 1-2 минуты и взять средний результат. Каждый раз после измерения времени рефлекса тщательно ополаскивать лапку в стаканчике с водой. Определив исходное время рефлекса, ввести под кожу спины 1% раствор фенола из расчета 0,1 мл на 10 г массы животного. Через каждые 5 минут после введения фенола (всего на протяжении 30 минут) определять время рефлекса. При этом необходимо обращать внимание на изменение характера ответной реакции и проявление спонтанных (не вызываемых воздействием раздражителя) судорожных сокращений скелетных мышц. Опыт следует прекратить, если действие раздражителя в течение 1 минуты не будет вызывать ответной реакции. По результатам построить график: Опыт № 2 Влияние стрихнина на время сгибательного рефлекса лягушки После определения исходного времени рефлекса (см. опыт № 1) ввести лягушке под кожу спины 0,05% раствор стрихнина из расчета 0,3 мл на 10 г массы животного. Через каждые 5 минут после введения стрихнина (на протяжении 30 минут) определять время рефлекса. Опыт следует прекратить, если в ответ на действие раздражителя начнут появляться тетанические судороги. По результатам построить график.
Опыт № 3 Влияние этанола на время сгибательного рефлекса лягушки После определения исходного времени рефлекса (см. опыт № 1) ввести лягушке под кожу спины 30% раствор этанола из расчета 0,2 мл на 10 г массы животного. Через каждые 5 минут после введения этанола (на протяжении 30 минут) определять время рефлекса. Обращать внимание на изменение характера ответной реакции. По результатам построить график. Опыт следует прекратить, если действие раздражителя в течение 1 минуты не будет вызывать ответной реакции. Помимо построения графиков необходимо также описать изменения характера ответной реакции на раздражитель у лягушек под влиянием фенола, стрихнина, этанола и описать судороги, вызываемые фенолом и стрихнином. Сделать выводы. Обсудить полученные результаты. По окончании работы следует разрушить зондом спинной мозг лягушки, убрать её в кювету.
Опыт № 4* Зависимость развития экспериментальной (камфарной) эпилепсии у белых мышей от функционального состояния их центральной нервной системы Двум мышам одновременно вводят под кожу по 0,3 мл 20% раствора камфарного масла. Одну мышь тотчас же помещают под стеклянный колпак, где находится вата, смоченная эфиром. Следят за поведением животных, отмечая время наступления судорог, их характер и время гибели мышей. Устанавливают, что у животных, находящихся в условиях эфирного наркоза камфорная эпилепсия, по сравнению с контрольной мышью, протекает иначе. Результаты заносят в протокол, данные опытов анализируют.
Опыт № 5 Трофические язвы при повреждении седалищного нерва У 1-2 крыс под легким эфирным наркозом перерезают ножницами седалищный нерв в средней трети бедра. Для этого животное фиксируют спиной кверху и делают следующую операцию: отпрепаровывают бескровным методом седалищный нерв и перерезают его. Для более успешного эффекта в центральный конец нерва вводят желчь или обрабатывают этот конец кислотой или щелочью. Края раны послойно зашивают. (На занятии наблюдают крыс, оперированных заранее). Какие найденные изменения в денервированной конечности можно объяснить выпадением трофической функции нервной системы?
Опыт № 6 Изучение нарушения двигательной функции у белых крыс (экспериментальный парапарез) Для проведения опыта крыса предварительно наркотизируется эфиром. Затем фиксируется на станке брюшком вниз. Затем на спине крысы в проекции пояснично-грудного отдела позвоночника выстригается шерсть 1,5 х 1,5 см. Эту область обрабатывают йодом. По средней линии, где пальпируются остистые отростки позвонков, вводят подкожно 0,5 мл раствора новокаина и внутрипозвоночно (между остистыми отростками) вводят 0,5 мл физиологического раствора. Через 2-3 минуты у животного наблюдают появление нарушений двигательной активности в задних конечностях, результаты заносят в протокол.
СПИСОК ОСНОВНОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
1. Патофизиология: в 3-х т. / А. И. Воложин [и др.]; под ред. А. И. Воложина, Г. В. Порядина. – М.: Академия, 2006. – Т.1: [учебник для студ. мед. вузов].– 2006. – 272 с., Т.2. – 2006. – 256 с., Т.3. – 2006. – 302 с. 2. Патофизиология: учебник для студ. мед. вузов / под ред. В. В. Новицкого и Е. Д. Гольдберга. – 3-е изд., стереотип. – Томск: Изд-во Томск. ун-та, 2006. – 716 с. 3. Литвицкий П.Ф. Патофизиология: В 2 т. – М.: Изд. дом «ГЭОТАР-МЕД», 2002. – Т. 1. – 752 с.; Т. 2. – 808 с. 4. Патология: в 2-х т. / под ред. М.А. Пальцева, В.С. Паукова. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. – Т. 1. – 512с. – Т. 2. – 488с. 5. Патологическая физиология. Фролов В.А., Дроздова Г.А. и др. – М.: ИД «Высшее Образование и Наука», 2002. – 708с. 6. Патологическая физиология /Под редакцией А.Д. Адо, М.А. Адо, В.И. Пыцкого, Г.В. Порядина и др. – М.: Триада-Х, 2000. – 574с. 7. Патологическая физиология: в 2 т.: Учеб. для стомат. фак. мед. вузов / [А. И. Воложин, Г. В. Порядин, Г. Н. Крыжановский и др.]; Под ред. А. И. Воложина, Г. В. Порядина. – М.: МЕДпресс, 2000 – Т. 2. – 2000. – 258 с. 8. Патологическая физиология: учебник / Н. Н. Зайко [и др.]; ред.: Н. Н. Зайко, Ю. В. Быць. – 3-е изд. – М.: МЕДпресс-информ, 2004. – 644 с. 9. Патологическая физиология /Под редакцией А.Д. Адо, В.В. Новицкого - Томск: Издательство Том. университета, 1994. – 468с. 10. Фролов В.А., Билибин Д.П. Общая патофизиология. Электронный курс по патофизиологии и вступительные статьи к нему. – М.: ООО «Медицинское информационное агентство», 2006. – 176 с. 11. Зайчик А.Ш., Чурилов Л.П. Основы общей патологии: в 2 ч. – Ч. 1: Основы общей патофизиологии. – СПб.: ЭЛБИ, 1999. – 624 с. Ч. 2: Основы патохимии. – СПб.: ЭЛБИ,1999. – 635 с. 12. Зайчик А.Ш., Чурилов Л.П. Патофизиология в 3 т. – Т. 3: Механизмы развития болезней и синдромов. – СПб.: ЭЛБИ – СПб., 2002. – 507 с. 13. Задачи и тестовые занятия по патофизиологии: Учеб. пособие /Под. ред. П.Ф. Литвицкого. – М.: ГЭОТАР – МЕД, 2002. – 384 с. |
|||||
Последнее изменение этой страницы: 2018-06-01; просмотров: 272. stydopedya.ru не претендует на авторское право материалов, которые вылажены, но предоставляет бесплатный доступ к ним. В случае нарушения авторского права или персональных данных напишите сюда... |